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  • 作者:海門市神鷹實驗器材廠 2016-07-27 16:14 3290
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    	常規切片在固定的時候的注意事項
    
    
    	固定是技術室工作的第一步,也是在整個制片過程中無法補救的一步。所謂“固定”,就是組織離體后,用各種辦法使其細胞內的物質盡量接近其生活狀態時的形態結構和位置的過程。固定的目的是為了防止組織細胞自溶與腐敗,防止了細胞內的酶對蛋白質的分解作用,使細胞內的各種成分如蛋白質、脂肪、碳水化合物或酶類轉變為不溶性物質,以保持原有的結構與生活時相仿。另外,組織固定后,均呈一定的硬化狀態,增加組織韌性,而且不易變形,有利于以后的組織處理。所以組織一旦離體必需及時固定,固定液的量應為組織的5 倍。固定的關鍵主要與固定的及時性、固定液的選擇、固定液的濃度、固定的溫度和時間有關。較常用的固定液為10%福爾馬林。筆者認為,10%福爾馬林由于受到福爾馬林的質量、使用時的揮發和取材時帶入的水分影響,濃度被降低致組織固定不足,而高濃度的福爾馬林,降低了對組織的穿透性,形成周圍固定好而*固定不到的現象。通過實踐,本人認為以酸性12~15%的福爾馬林較佳。大標本(2cm 厚)一般需要6~12個小時,小標本一般需要3~6 個小時;當室溫低18℃時,可在37℃以下的溫箱內加溫4~6 個小時。由于HE 染色較佳著色PH為3.5~4.5, 中性福爾馬林對蘇木素染色有一定影響,細胞核*發灰,核染色質不佳。 
    
    	實驗室玻璃在正常使用時破裂,通常是由于碎片、磨蝕或劃痕的結果,或者與玻璃本身經歷**的溫度或壓力變化所導致。一旦得到您的實驗室玻璃儀器,在使用前請仔細檢查,拿著玻璃儀器在自然光線下觀察是否有碎片裂痕或裂縫等。即使是非常細小的裂縫也可能導致在高溫或高壓情況下的玻璃破裂。
    
    
    	暴沸的玻璃儀器靠到任何物體(如其它玻璃儀器、水池邊、桌子邊等),這樣可以避免玻璃儀器起的細小的爆裂或裂縫。
    
    
    	不要長時間將玻璃儀器浸泡在強堿溶液中以避免對玻璃儀器的損壞。
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